MT0010 TRIzol试剂
产品简介
北京百奥莱博供应的TRIzol试剂用于生化实验研究等领域,TRIzol试剂是我司众多优质RNA提取纯化之一,质量堪比同类进口产品,价格非常优惠,目前正热烈促销中,恭候您的咨询订购。...
产品详细介绍
特别提示:包括TRIzol试剂在内,本公司的所有产品仅可用于科研实验,严禁用于临床医疗及其他非科研用途!
产品名称:TRIzol试剂
英文名称:TRIzol Reagent
产品货号:MT0010
产品规格:100ml
TRIzol Reagent是一种可用于提取动植物和细菌来源的组织或细胞RNA的制品。样本在进行匀浆的过程中,TRIzol Reagent能够充分破坏细胞,裂解细胞内含物,同时可抑制RNA酶的活性,从而保持RNA的完整性。TRIzol Reagent具有很强的广谱性,可以适用于各种样品的总RNA提取,提取过程方便快速,整个操作在一小时内便可以完成。该试剂可用于小量样品(20-100mg组织、1×106细胞)也适用于大量样品(≥1g组织、>107细胞);对人、动物、植物组织、细菌均适用,可同时处理大量不同样品,整个提取过程在一小时内即可完成。分离的总RNA无蛋白质和DNA污染,可用于Northern Blot、Dot blot、ployA筛选、体外翻译、RNase保护分析和基因克隆。
样本量及 RNA 产量:
样本类型 | 样本量 | 产量 |
白细胞 | 1×106个 | 10~20μg |
植物材料 | 25mg | 10~20μg |
细胞 | 1×106个 | 8~15μg |
肌肉/脑等组织 | 50mg | 10~25μg |
肝脏组织 | 50mg | 100~300μg |
储存:2-8℃避光保存,可保存 2 年。
注意:该试剂含有强变性剂,请勿直接于皮肤接触或吞咽,若接触到皮肤或眼睛请尽快到医院处理。实验时务必穿实验服,戴手套。
自备试剂:氯fǎng,异丙醇,70%乙醇(DEPC 水配置),RNase-Free H2O。
操作方法:
一、实验前准备:
RNA 制备的关键是要抑制细胞中的RNA 分解酶和防止所用器具及试剂中的RNA 分解酶的污染。因此,在实验中必须采取以下措施:戴一次性干净手套;使用RNA 操作专用实验台;在操作过程中避免讲话等等。通过以上办法可以防止实验者的汗液、唾液中的RNA 分解酶的污染。
注意事项:
1. 尽量使用一次性塑料器皿,若用玻璃器皿,应在使用前用0.1%DEPC 水溶液在37℃处理 12h,然后在120℃高压灭30分钟 以除去残留的DEPC。
2. 用于 RNA 实验的试剂,须使用干热灭菌(180℃,60min)或使用上述方法进行 DEPC 水处理灭菌后的玻璃容器盛装(也可以使用RNA 实验用的一次性塑料容器),使用的无菌水须用0.1%的DEPC 处理后再进行高温高压灭菌。
3. RNA 实验用的试剂和无菌水都应专用,避免混用后交叉污染。
二、实验操作:
TRIzol Reagent的使用量情况如下:
10cm2贴壁培养细胞 | 1ml |
1×106~10×106悬浮培养细胞 | 1ml |
50-100mg的普通组织样品(肌肉等) | 1ml |
30-50mg的特殊组织样品(肝、脾等) | 1-2ml |
30-50mg的植物材料 | 1ml |
白细胞(1×106) | 1ml |
TRIzol 使用方法:
贴壁细胞 | 悬浮细胞、酵母、细菌 | 动植物组织 | |
1.样品预处理 | 每 10 cm2 生长的培养细胞中倒出培 养液,用PBS 清洗一次,尽可能移 除多余的溶液。 | 将悬浮培养细胞连同培养液一起 倒入离心管中,8,000 rpm离心2分钟,弃上清,加入50μl无菌水 重悬细胞至无明显沉淀。 | 将样品转移至用液氮预冷的研钵中,用研杵研磨组织,其间不断加 入液氮,直至研磨成粉末状。 |
2.加入TRIzol | 加入1ml TRIzol,使裂解液均匀分布 于细胞表面,然后使用移液枪吹打细 胞使其脱落。将细胞的裂解液转移至 1.5ml EP管中。 | 加入1ml TRIzol。 | 将研磨好的组织加入到装有 1ml TRIzol的1.5ml EP管中。 |
3.裂解样品 | 加入TRIzol 后立即手腕用力上下颠倒至细胞、组织粉末等分散均匀,无块状物。室温静置 5分钟,使核酸蛋白 复合物完全分离。 | ||
4.加氯fǎng | 加入200μl 氯fǎng,手腕用力振荡 15s,室温放置 2分钟。 | ||
5.离心分层 | 13000rpm离心10分钟,吸取600μl无色上清至新的1.5EP管中。 | ||
6.加异丙醇 | 向上述600μl上清液中加入600μl 异丙醇,手腕用力上下颠倒数次,于-20℃放置 5分钟。 | ||
7.离心沉淀总RNA | 13000rpm离心10分钟,小心倒掉上清,留取底部总RNA 沉淀。 | ||
8.漂洗总RNA | 向沉淀中每管加入1ml 70%乙醇,上下颠倒数次,13000rpm离心5分钟,小心倒掉上清,留取底部 RNA 沉淀。 | ||
9.重复漂洗一次 | 重复步骤8再洗涤一次。 | ||
10.挥发残留乙醇 | 倒掉洗液,再次短离心10s 后,用10μl Tip 头吸干剩余的洗液,置于室温使乙醇挥发干净(~20分钟)。 | ||
11.溶解总RNA | 每管加入20~100μl TE Buffer或Rnase-Free H2O溶解总RNA。 |
常见问题分析:
1.抽提率低。
可能原因:
a. 样品裂解或匀浆处理不彻底;
b. RNA 沉淀未完全溶解。
2.A260/A280<1.65。
可能原因:
a. 检测吸光度时,RNA 样品没有溶于水,而溶于了TE中;
b.样品匀浆时加的组织量过多;
c.分层后,吸取上清液不足 500μl;
d.吸取水相时混入了有机相。
3.DNA 污染过多。
可能原因:
a. 样品匀浆时加的试剂量太少或组织量过多;
b. 样品中含有有机溶剂。
解决方法:使用该试剂通常基因组DNA 污染含量<0.1ng/μl,如需要彻底去除DNA的污染,请使用Rnase-Free DNase I(货号:MT0090)消化去除基因组DNA 污染。如使用cDNA 链反转录试剂盒(含基因组去除剂)(货号:MT0015)则无需提前消化去除基因组DNA 污染,该试剂盒中包含了去除基因组DNA 污染的试剂。
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试剂盒特点:
1. 操作更加简单快速,整个过程只需要不到十分钟(对一个样品而言)。
2. RNA 纯度更高,OD260/OD280一般在2.0左右。
3.一般不含用RT-PCR可以检测到的基因组DNA污染。
4.适用于培养细胞、大部分动物组织和部分植物组织。
5. 得到的RNA可直接用于RT-PCR、Northern杂交、cDNA 合成等实验。
6. 高于进口的柱式RNA提取产品。
试剂盒组成:
成分 | 50T |
溶液A | 50ml |
溶液B | 25ml |
离心吸附柱 | 50套 |
通用洗柱液 | 50ml |
RNA 洗脱液 | 10ml |
说明书 | 1份 |
储存条件:常温运输,4℃保存,有效期一年。
使用方法:
下面的操作步骤是针对在1.5mL塑料离心管中进行的微量提取的,如果处理样品量大,请按比例增加各成份的用量并使用大的离心管和离心机。
1. 根据组织细胞类型的不同分为下面及种情况使用:
a)对贴壁细胞:吸尽培养液,在每10 平方厘米细胞中加入1mL溶液A,用枪轻柔吹打数次,确保细胞全部裂解。
b)对悬浮细胞:离心收集细胞,吸尽液体,在每1-5×106 悬浮细胞中加入1mL溶液A,用枪轻柔吹打数次,确保细胞全部裂解。如果是fibroblasts或carcinoma cell,1mL溶液A的细胞使用量不要超过1×106个细胞。
c)对新鲜组织:先将剪切成小块新鲜组织或液氮保存的组织放入10mL或15mL塑料离心管中,每50-100mg 组织加1mL溶液A,用匀浆器匀浆30秒左右。对肝、脾、胰、肾等细胞分裂十分旺盛的组织(细胞中含大量正在复制的DNA),建议组织的使用量不要超过50mg/ mL溶液A,否则十分容易产生DNA污染。
d)对RNAhold 保存组织:先用纸吸去RNAhold液体后再剪切成小块,其余操作同新鲜组织的处理。
2. 将裂解物转移至一个干净的1.5mL塑料离心管中,然后加入0.2倍体积的自备氯fǎng(1mL溶液A需0.2mL 氯fǎng),振荡器上充分振荡混均30秒。
3. 12000rpm室温离心3~5分钟。
4. 将上清液(约0.6-0.8mL的无色透明水相,有时水相比重大时,水相在下层,有机相即蓝相在上层,吸取时应吸取透明水相)转移到一个干净的1.5mL塑料离心管中。注意:离心后下层有机相和中间层含有DNA和蛋白质,避免触及,否则将产生蛋白质和DNA污染。为保险起见,可以留下100μl上清液不取。同时吸取上清时zuì好缓慢进行,否则容易吸出交界面的不可见的丝状DNA。
5. 加入等体积的溶液B,充分颠倒混匀。
6. 将一半的溶液转移到离心吸附柱中,12000rpm室温离心半分钟,弃穿透液。
7. 将剩下的一半溶液转移到同一离心吸附柱中,12000rpm室温离心半分钟,弃穿透液。
8. 加0.7mL 通用洗柱液到离心吸附柱中,室温离心半分钟,弃收集管中的穿透液。一次洗涤一般足够去除杂质。
9. 加0.3mL 通用洗柱液,室温离心半分钟,弃穿透液。此步可以省略。
10.室温12000 rmp离心半分钟。此步十分重要,否则残留的通用洗柱液会影响RNA的使用。
11. 将离心吸附柱转移到一自备的RNase-free 收集管中,加入50-100μL RNA 洗脱液。
12.室温12000 rmp离心半分钟,离心管中溶液即为RNA样品,可以立即使用或存放于-80℃待用。
13. RNA的电泳检测:本试剂盒提取的RNA zuì好用甲醛变性胶电泳,如果在非变性的普通琼脂糖胶(in TAE或TBE buffer)上电泳,一定要使用RNA 专用上样液RNAload(操作详见RNAload 使用手册),千万不要使用常用的DNA上样液,因为DNA上样液没有经过去RNase处理,也不能将RNA变性,得到的带型将十分杂乱。
14. RNA 完整性的电泳检测:如果需要做Northern杂交,强烈建议用户使用甲醛变性胶进行RNA电泳,因为非变性胶不能分离所有的RNA分子(BioTechniques,28:414,2000)。
15. RNA产量产率测定:将5-10μl RNA 溶于TE缓冲液中(pH7.5-8.2 之间)检测其在OD260的光吸收。通过光吸收可以得出RNA浓度(1 OD260的RNA=40μg/mL),进而计算出RNA的产量(浓度×体积)和产率(RNA产量/组织用量)。
16. RNA 纯度测定:无污染的总RNA的OD260/OD280一般在1.8-2.1 之间(具体数值与其碱基组成和溶液成分等多种因素有关),高于此范围则分别表示样品可能有蛋白质污染,但一般不影响RT-PCR等反应。
疑难解答:
Q:上样孔里的红色荧光物一定是DNA污染吗?
A:不是。用TAE或TBE电泳液和非变性胶电泳RNA时容易产生此现象,我们初步研究发现大部分红色荧光物是变性不充分的单链RNA通过碱基互补或通过硼酸络合(如果使用TBE作电泳液的话)形成的复合物,加RNase处理后,这些红色荧光物(RNA)一般会消失。为避免此现象,建议zuì好使用甲醛变性胶电泳和RNA 专用上样液(如RNAload)。
Q:如何确认和去处除污染的基因组DNA?
A:如果怀疑有DNA污染,可以用RNase处理RNA样品,然后再电泳。如果上样孔里的红色荧光物不消失,则表示是基因组DNA污染。进一步确认可以使用PCR扩增法。去除污染的DNA可以使用百奥莱博的非酶的DNA去除剂DNA Scavenger或RNase-free DNase,由于RNase-free DNase一般都有残留的RNase污染,所以必须严格按照厂家提供的使用说明书进行操作。
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